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          兩種常用蛋白純化的方法(Ni柱親和層析和離子交換層析)
          發(fā)布時(shí)間:2021-11-03     作者:axc   分享到:

          兩種常用蛋白純化的方法(Ni柱親和層析和離子交換層析)

          蛋白純化技術(shù)是生物研究領(lǐng)域的一項(xiàng)重要技術(shù)。要研究某一個(gè)特殊蛋白質(zhì),**就要將這個(gè)蛋白從生物體中分離純化出來(lái)。蛋白純化方法主要是利用不同蛋白質(zhì)間的相似性與差異,依據(jù)蛋白間的相似性可以去除非蛋白物質(zhì),再根據(jù)蛋白質(zhì)的差異性將目的蛋白分離出來(lái)。在本文中,我們將介紹2種常用的蛋白純化的方法。

          一、Ni柱親和層析

          1、自制的簡(jiǎn)易柱子,直徑約為1cm,長(zhǎng)度約為2cm,在柱子的下端加入蒸餾水,并關(guān)閉柱子的出口。

          2、將瓊脂糖凝膠倒入柱子,讓填料自然沉降,依次用二到五倍的柱子體積的無(wú)菌水、8mol/L的尿素、無(wú)菌水洗柱子。

          3、緩慢加入5ml的硫酸鎳,至柱子的顏色由白色變?yōu)樗{(lán)色,待藍(lán)綠色收集液體滴下來(lái)為止。

          4、用二到五倍體積的PBS緩沖液平衡柱子,再將粗蛋白樣品進(jìn)行上樣,用梯度濃度50mmol/L、70mmol/L150mmol/L、250mmol/L咪唑進(jìn)行過(guò)柱,流速約為1ml/min。

          5、以每個(gè)濃度用1.5mlEppendorf收集八管,再用二到五倍體積的無(wú)菌水洗柱子,再用二到五倍的50mmol/LEDTA洗柱子,除去NiSO4,待至無(wú)色狀態(tài)

          6、用多倍體積的無(wú)菌水進(jìn)行洗柱子,將手機(jī)液10%的分離膠進(jìn)行SDS—PAGE分析。

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           二、離子交換層析

          1、將macro prep High-Q強(qiáng)陰離子交換填料混勻,吸取16 ml于小燒杯中,靜置待填料沉降至燒杯底部,吸取并棄去上清。

          2、在燒杯中加入4倍體積的ddH2O,混勻,靜置,沉降后去上清。重復(fù)2次以充分洗去保存填料中的乙醇。

          3、在空柱中加入柱體積10%的裝柱緩沖液,靜置除去可能存在于柱壁和柱底部薄膜上的氣泡。

          4、以1:1v/v)比例在燒杯中加入裝柱緩沖液(20 mM sodium phosphate, pH 7.0, 1 M NaCl),混勻。用玻璃棒引流加入至柱中,并用裝柱緩沖液填滿剩余柱體積。靜置30 min。

          5、待填料均沉降至柱底部后,將適配器以較小的傾斜角度插入至柱中填料頂部。

          1)打開(kāi)柱低端開(kāi)口,以較大流速10 ml/min泵入裝柱緩沖液,壓實(shí)填料。

          2)緩慢降低緩沖液的流速,并將裝柱緩沖液更換成結(jié)合緩沖液(20 mM sodium phosphate, pH 7.0)。

          3)設(shè)定蛋白純化程序,使用15倍柱體積緩沖液線性梯度洗脫目的蛋白。

          4)收集流出液,進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)。

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